Изолированный ганглий

По-видимому, значительную роль в этом играет уменьшение скорости диффузии веществ через слой агара от поверхности клетки в окружающую среду.

Кроме того, при культивировании тканей беспозвоночных агар может служить хорошим средством для закрепления эксплантатов на поверхности покровного стекла или культурального сосуда.

Интересны работы Чена и Леви-Монтальчини. Они культивировали мозг и изолированные нервные клетки зародышей американского таракана Periplaneta americana в течение 1 и 5 месяцев соответственно и показали, что нервные клетки насекомых вполне сравнимы по переживанию и росту с клетками позвоночных; кроме того, они быстрее адаптируются и менее требовательны к условиям культивирования. Они использовали среду, состоящую из 4 частей раствора аминокислот среды Игла и 5 частей питательной среды для насекомых по Шнейдеру.

Таким образом, видовые и возрастные различия в потребностях нервной ткани беспозвоночных животных обусловливают разнообразие питательных сред, необходимых для их успешного культивирования, и совершенно необходимо, чтобы ионный состав и осмотическое давление питательной среды соответствовали тканевой жидкости каждого вида.

К трудностям культивирования тканей беспозвоночных относится возможность инфицирования культур вследствие естественной зараженности покровов и тканей животных. Эта проблема практически отсутствует при работе с позвоночными животными. Чтобы уменьшить вероятность заражения культур, покровы животного перед эксплантацией промывают водой, а затем 70%-ным этанолом.

Кроме наружных покровов также подвергается обработке выделенная ткань (тщательно промывается стерильным физиологическим раствором и инкубируется в растворе антибиотиков). Используется пенициллин, стрептомицин и нистатин в концентрациях от 500 до 2000 ед/мл. Непосредственно в культуральную среду также добавляются антибиотики в концентрации до 200 ед/мл.